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U14細胞(小鼠子宮頸癌細胞)貨號:STM-CL-6513 規格:1×10⁶cells/T25培養(yang) 瓶或1mL凍存管

U14細胞(小鼠子宮頸癌細胞)

  • 來源:子宮
  • 細胞特征:貼壁細胞 , 上皮細胞樣
  • 培養(yang) 基:DMEM+10% FBS+10% P/S
Tags: 子宮頸癌細胞    
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價(jia) 格:¥ 1,300.00
提供STR鑒定報告

U14小鼠子宮頸癌細胞係源於(yu) 1958年,最初是通過將20-甲基膽蒽注入KM幼鼠的子宮頸以誘發癌症,隨後將誘導的瘤細胞懸液注射到615小鼠的腹腔中,利用腹水進行原代培養(yang) 。最終通過將這些細胞懸液在雌性小鼠的皮下進行移植和傳(chuan) 代,建立了U14細胞係。

U14細胞參數表

細胞名稱U14細胞(小鼠子宮頸癌細胞)
細胞別稱u-14;u14
種屬來源小鼠子宮頸
細胞形態上皮細胞樣,貼壁生長
移植成瘤率在615小鼠和C57BL/6小鼠中均為100%
主要用途僅供科研使用
建立時間1958年,20-甲基膽蒽誘發KM幼鼠宮頸癌後建立
培養基DMEM高糖培養基,添加10%胎牛血清和1%雙抗
培養環境空氣95%,CO2 5%,37℃,濕度70%-80%
傳代信息比例1:2;頻率每2-3天一次,根據生長情況調整
凍存條件液氮存儲;凍存液:90%血清,10%DMSO,現用現配
安全性檢測細菌、酵母、支原體、HIV、乙肝、丙肝均陰性;二級生物安全
細胞傳代步驟1. 80-90%匯合時處理 2. PBS洗滌,胰酶消化 3. 終止消化離心 4. 1:2比例傳代
分子特征可能過表達HPV相關蛋白(E6/E7);p53/pRb可能異常;可能表達CD44/ALDH1等
染色體特征可能存在非整倍體或染色體結構異常

培養教程

U14小鼠子宮頸癌細胞培養教程

U14細胞複蘇步驟

  • 準備5mL完全培養(yang) 基置於(yu) 15mL離心管中,37℃水浴預熱,適合U14細胞的複蘇。

  • 取出凍存的U14細胞,放入37℃水浴中快速解凍(約1分鍾)。

  • 將解凍的U14細胞懸液加入到預熱培養(yang) 基的離心管中,1000rpm離心5分鍾。

  • 吸棄上清後,用2mL完全培養(yang) 基重懸U14細胞,轉移至T25培養(yang) 瓶中。

  • 將培養(yang) 瓶置於(yu) 37℃,5% CO2飽和濕度的培養(yang) 箱中。

  • 24小時後觀察U14細胞貼壁情況,吸棄舊培養(yang) 基,換上新鮮預熱的完全培養(yang) 基繼續培養(yang) 。

U14細胞傳代步驟

  • 觀察細胞密度:當U14細胞生長至80%-90%匯合時進行傳(chuan) 代。

  • 吸棄舊培養(yang) 基,用1mL無菌PBS清洗一次,去除殘餘(yu) 培養(yang) 基和血清,適合U14細胞的處理。

  • 加入1mL 0.25%胰酶,37℃消化1-2分鍾,待U14細胞鬆散後,加入完全培養(yang) 基終止消化。

  • 收集U14細胞懸液,1000rpm離心5分鍾,吸棄上清,用完全培養(yang) 基重懸U14細胞。

  • 按1:2比例將重懸的U14細胞加入新的培養(yang) 瓶中,繼續培養(yang) 。

U14細胞凍存步驟

  • 製備凍存液:現用現配,成分為(wei) 90%胎牛血清和10%DMSO,適合U14細胞的凍存。

  • 當U14細胞達到適當密度,吸棄培養(yang) 基,用PBS潤洗後胰酶消化收集U14細胞。

  • 1000rpm離心5分鍾,棄去上清,用凍存液重懸U14細胞。

  • 將U14細胞懸液分裝到凍存管中,逐步降溫(-80℃過夜後轉入液氮中長期保存)。

注意事項

  • 運輸用培養(yang) 基:運輸用的培養(yang) 基不宜再次用於(yu) 培養(yang) U14細胞,應按照說明書(shu) 重新配置完全培養(yang) 基。

  • 顯微鏡觀察:收到U14細胞後,用顯微鏡確認U14細胞狀態並拍照留存。

  • 初次傳(chuan) 代:收到U14細胞後首次傳(chuan) 代建議使用T25培養(yang) 瓶按1:2比例傳(chuan) 代。

常見問題及解決方法

  • U14細胞貼壁不良:

  • 原因:運輸過程中的振動可能導致U14細胞脫落。

  • 解決(jue) 方法:將培養(yang) 瓶置於(yu) 37°C培養(yang) 箱中靜置2-3小時,讓U14細胞重新貼壁。


  • U14細胞生長速度緩慢:

  • 原因:培養(yang) 基配方不當或U14細胞密度過低。

  • 解決(jue) 方法:確保使用正確的培養(yang) 基(DMEM+10% FBS+1% P/S),並保持適當的U14細胞密度。


  • U14細胞汙染:

  • 原因:操作不當或培養(yang) 環境不潔淨。

  • 解決(jue) 方法:嚴(yan) 格遵守無菌操作規程,定期檢查U14細胞是否有汙染跡象。


  • 傳(chuan) 代後U14細胞死亡率高:

  • 原因:胰酶消化時間過長或操作不當。

  • 解決(jue) 方法:控製胰酶消化時間(1-2分鍾),輕柔操作,避免過度吹打。


  • U14細胞形態異常:

  • 原因:培養(yang) 條件不適或U14細胞狀態不佳。

  • 解決(jue) 方法:確保培養(yang) 環境正確(37°C,5% CO2,飽和濕度),定期觀察U14細胞形態。


  • 凍存U14細胞複蘇率低:

  • 原因:凍存或複蘇過程操作不當。

  • 解決(jue) 方法:嚴(yan) 格按照標準流程進行凍存和複蘇,使用90%胎牛血清+10% DMSO的凍存液。


  • U14細胞密度控製不當:

  • 原因:傳(chuan) 代比例或頻率不適合。

  • 解決(jue) 方法:根據U14細胞生長情況調整傳(chuan) 代比例(1:2-1:4),每2-3天換液一次。


  • 培養(yang) 基變色過快:

  • 原因:U14細胞代謝旺盛或汙染。

  • 解決(jue) 方法:增加換液頻率,檢查是否有汙染。


  • U14細胞脫落:

  • 原因:培養(yang) 瓶表麵處理不當或U14細胞過度生長。

  • 解決(jue) 方法:使用處理過的培養(yang) 瓶,適時傳(chuan) 代避免U14細胞過度生長。


  • 成瘤率下降:

  • 原因:U14細胞傳(chuan) 代次數過多或培養(yang) 條件長期不適。

  • 解決(jue) 方法:控製傳(chuan) 代次數,定期檢查和優(you) 化培養(yang) 條件。

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