
U14細胞(小鼠子宮頸癌細胞)
- 來源:子宮
- 細胞特征:貼壁細胞 , 上皮細胞樣
- 培養(yang) 基:DMEM+10% FBS+10% P/S
U14小鼠子宮頸癌細胞係源於(yu) 1958年,最初是通過將20-甲基膽蒽注入KM幼鼠的子宮頸以誘發癌症,隨後將誘導的瘤細胞懸液注射到615小鼠的腹腔中,利用腹水進行原代培養(yang) 。最終通過將這些細胞懸液在雌性小鼠的皮下進行移植和傳(chuan) 代,建立了U14細胞係。
U14細胞參數表
細胞名稱 | U14細胞(小鼠子宮頸癌細胞) |
細胞別稱 | u-14;u14 |
種屬來源 | 小鼠子宮頸 |
細胞形態 | 上皮細胞樣,貼壁生長 |
移植成瘤率 | 在615小鼠和C57BL/6小鼠中均為100% |
主要用途 | 僅供科研使用 |
建立時間 | 1958年,20-甲基膽蒽誘發KM幼鼠宮頸癌後建立 |
培養基 | DMEM高糖培養基,添加10%胎牛血清和1%雙抗 |
培養環境 | 空氣95%,CO2 5%,37℃,濕度70%-80% |
傳代信息 | 比例1:2;頻率每2-3天一次,根據生長情況調整 |
凍存條件 | 液氮存儲;凍存液:90%血清,10%DMSO,現用現配 |
安全性檢測 | 細菌、酵母、支原體、HIV、乙肝、丙肝均陰性;二級生物安全 |
細胞傳代步驟 | 1. 80-90%匯合時處理 2. PBS洗滌,胰酶消化 3. 終止消化離心 4. 1:2比例傳代 |
分子特征 | 可能過表達HPV相關蛋白(E6/E7);p53/pRb可能異常;可能表達CD44/ALDH1等 |
染色體特征 | 可能存在非整倍體或染色體結構異常 |
培養教程
U14小鼠子宮頸癌細胞培養教程
U14細胞複蘇步驟
準備5mL完全培養(yang) 基置於(yu) 15mL離心管中,37℃水浴預熱,適合U14細胞的複蘇。
取出凍存的U14細胞,放入37℃水浴中快速解凍(約1分鍾)。
將解凍的U14細胞懸液加入到預熱培養(yang) 基的離心管中,1000rpm離心5分鍾。
吸棄上清後,用2mL完全培養(yang) 基重懸U14細胞,轉移至T25培養(yang) 瓶中。
將培養(yang) 瓶置於(yu) 37℃,5% CO2飽和濕度的培養(yang) 箱中。
24小時後觀察U14細胞貼壁情況,吸棄舊培養(yang) 基,換上新鮮預熱的完全培養(yang) 基繼續培養(yang) 。
U14細胞傳代步驟
觀察細胞密度:當U14細胞生長至80%-90%匯合時進行傳(chuan) 代。
吸棄舊培養(yang) 基,用1mL無菌PBS清洗一次,去除殘餘(yu) 培養(yang) 基和血清,適合U14細胞的處理。
加入1mL 0.25%胰酶,37℃消化1-2分鍾,待U14細胞鬆散後,加入完全培養(yang) 基終止消化。
收集U14細胞懸液,1000rpm離心5分鍾,吸棄上清,用完全培養(yang) 基重懸U14細胞。
按1:2比例將重懸的U14細胞加入新的培養(yang) 瓶中,繼續培養(yang) 。
U14細胞凍存步驟
製備凍存液:現用現配,成分為(wei) 90%胎牛血清和10%DMSO,適合U14細胞的凍存。
當U14細胞達到適當密度,吸棄培養(yang) 基,用PBS潤洗後胰酶消化收集U14細胞。
1000rpm離心5分鍾,棄去上清,用凍存液重懸U14細胞。
將U14細胞懸液分裝到凍存管中,逐步降溫(-80℃過夜後轉入液氮中長期保存)。
注意事項
運輸用培養(yang) 基:運輸用的培養(yang) 基不宜再次用於(yu) 培養(yang) U14細胞,應按照說明書(shu) 重新配置完全培養(yang) 基。
顯微鏡觀察:收到U14細胞後,用顯微鏡確認U14細胞狀態並拍照留存。
初次傳(chuan) 代:收到U14細胞後首次傳(chuan) 代建議使用T25培養(yang) 瓶按1:2比例傳(chuan) 代。
常見問題及解決方法
U14細胞貼壁不良:
原因:運輸過程中的振動可能導致U14細胞脫落。
解決(jue) 方法:將培養(yang) 瓶置於(yu) 37°C培養(yang) 箱中靜置2-3小時,讓U14細胞重新貼壁。
U14細胞生長速度緩慢:
原因:培養(yang) 基配方不當或U14細胞密度過低。
解決(jue) 方法:確保使用正確的培養(yang) 基(DMEM+10% FBS+1% P/S),並保持適當的U14細胞密度。
U14細胞汙染:
原因:操作不當或培養(yang) 環境不潔淨。
解決(jue) 方法:嚴(yan) 格遵守無菌操作規程,定期檢查U14細胞是否有汙染跡象。
傳(chuan) 代後U14細胞死亡率高:
原因:胰酶消化時間過長或操作不當。
解決(jue) 方法:控製胰酶消化時間(1-2分鍾),輕柔操作,避免過度吹打。
U14細胞形態異常:
原因:培養(yang) 條件不適或U14細胞狀態不佳。
解決(jue) 方法:確保培養(yang) 環境正確(37°C,5% CO2,飽和濕度),定期觀察U14細胞形態。
凍存U14細胞複蘇率低:
原因:凍存或複蘇過程操作不當。
解決(jue) 方法:嚴(yan) 格按照標準流程進行凍存和複蘇,使用90%胎牛血清+10% DMSO的凍存液。
U14細胞密度控製不當:
原因:傳(chuan) 代比例或頻率不適合。
解決(jue) 方法:根據U14細胞生長情況調整傳(chuan) 代比例(1:2-1:4),每2-3天換液一次。
培養(yang) 基變色過快:
原因:U14細胞代謝旺盛或汙染。
解決(jue) 方法:增加換液頻率,檢查是否有汙染。
U14細胞脫落:
原因:培養(yang) 瓶表麵處理不當或U14細胞過度生長。
解決(jue) 方法:使用處理過的培養(yang) 瓶,適時傳(chuan) 代避免U14細胞過度生長。
成瘤率下降:
原因:U14細胞傳(chuan) 代次數過多或培養(yang) 條件長期不適。
解決(jue) 方法:控製傳(chuan) 代次數,定期檢查和優(you) 化培養(yang) 條件。
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參考文獻
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