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661W細胞(小鼠視網膜神經節細胞)貨號:STM-CL-6015 規格:1×10⁶cells/T25培養(yang) 瓶或1mL凍存管

661W細胞(小鼠視網膜神經節細胞)

  • 來源:視網膜;錐狀細胞
  • 細胞特征:貼壁細胞 , 成纖維細胞樣
  • 培養(yang) 基:DMEM+10% FBS+1% P/S
  • 其他: 攜帶SV40基因,這是使661W細胞永生化的關(guan) 鍵因素
Tags: 視網膜神經節細胞    
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價(jia) 格:¥ 2,200.00
提供STR鑒定報告

661W細胞係來源於(yu) 雄性C57BL/6N轉基因小鼠的視網膜組織,屬於(yu) 視網膜神經節細胞類型,並帶有SV40病毒基因。661W感光細胞係由視網膜錐細胞轉化而成,具備視錐細胞的標記物,是研究視網膜及睫狀體(ti) 疾病的有效細胞模型。

661W細胞特性特征

  • 轉基因特性: 攜帶SV40基因,這是使661W細胞永生化的關(guan) 鍵因素。

  • 視錐細胞標記: 661W細胞表達視錐細胞特有的分子標記,使其成為(wei) 研究視網膜光感受器的理想模型。

  • 光感受性: 661W細胞作為(wei) 視網膜感光細胞,對光刺激有反應。

  • 低氧敏感性: 661W細胞在低氧條件下會(hui) 發生時間依賴性死亡。

661W小鼠視網膜神經節細胞參數表

細胞名稱661W細胞(小鼠視網膜神經節細胞)
細胞別稱661W; 661w; 661W細胞係
細胞類型小鼠視網膜神經節細胞,視網膜錐細胞
物種來源雄性C57BL/6N轉基因小鼠
形態生長特性成纖維細胞樣;貼壁生長
生物安全等級2
致瘤性具有致瘤性
轉基因特性攜帶SV40基因
細胞特征/純度具有視錐細胞標記;純度通常高於90%
收錄信息LONZA; 
培養基配方DMEM + 10% FBS + 1% P/S
專用培養基小鼠視網膜神經節細胞專用培養基
培養環境37℃,5% CO2,飽和濕度
換液/傳代每2-3天換液;傳代比例1:2至1:4
培養基用量T25瓶:10-12ml;10cm培養皿:12-15ml
凍存液/規格92% FBS + 8% DMSO 或 92%完全培養基 + 8% DMSO;200-300萬細胞/ml,1ml/管
低氧反應低氧條件下時間依賴性死亡;自噬水平8小時達峰值
凋亡/共培養缺氧誘導凋亡增加;與骨髓間充質幹細胞共培養可減少缺氧凋亡
細胞鑒定MAP-2免疫熒光染色
研究用途光感受器細胞研究,視網膜疾病模型,藥物篩選,基因功能研究
操作要求嚴格控製胰酶消化時間;輕柔操作避免氣泡
質量控製凍存後及時檢查活性;定期監測細胞狀態
實驗設計考慮細胞對低氧的敏感性

培養教程

661W小鼠視網膜神經節細胞培養教程

傳代步驟

  • 吸幹T25瓶中的原培養(yang) 基。

  • 用3-4ml常溫PBS輕輕衝(chong) 洗661W細胞10-20秒,隨後吸走PBS。

  • 加入約1ml胰酶,輕輕晃動培養(yang) 瓶使胰酶均勻覆蓋在661W細胞層上。

  • 將培養(yang) 瓶放入37℃培養(yang) 箱中消化,觀察661W細胞間隙變化。

  • 當細胞間隙增大但未完全脫落時,加入2-3ml完全培養(yang) 基終止消化。

  • 將661W細胞懸液混勻,900rpm離心3-5分鍾,棄上清液。

  • 用新鮮完全培養(yang) 基輕輕重懸661W細胞,均勻分配至新培養(yang) 瓶中。

  • 補足完全培養(yang) 基,將培養(yang) 瓶放回培養(yang) 箱中繼續培養(yang) 661W細胞。

凍存方法

  • 凍存液配方: 92% FBS + 8% DMSO(推薦給新手)或92%完全培養(yang) 基 + 8% DMSO(推薦給有經驗者)

  • 凍存規格: 200-300萬(wan) 661W細胞/ml,1ml每管

  • 消化並離心後,加入配製好的凍存液輕輕重懸661W細胞。

  • 將661W細胞懸液迅速轉移至標記好的凍存管中。

  • 將凍存管放入程序凍存盒中,置於(yu) -80℃冰箱過夜,次日轉入液氮中保存。

  • 若無程序凍存盒,可將凍存管放在泡沫盒中於(yu) 4℃靜置5-10分鍾,再於(yu) -20℃靜置2小時後轉入-80℃冰箱過夜,次日轉入液氮保存。

注意事項

  • 消化控製: 不同品牌的胰酶消化時間差異較大,需嚴(yan) 格控製消化時間以避免對661W細胞的過度損傷(shang) 。

  • 操作要求: 傳(chuan) 代操作時需輕柔,避免產(chan) 生過多氣泡。

  • 質量控製: 凍存後應及時複蘇一管661W細胞以檢查細胞活性,並定期監測661W細胞狀態以確保其未發生變異或汙染。

  • 實驗設計: 由於(yu) 661W細胞對低氧條件的敏感性,設計相關(guan) 實驗時需考慮低氧對661W細胞生物學特性的影響。

低氧條件下的生長特性

  • 基因表達和信號通路:低氧條件下(1% O2和5% CO2)與(yu) 常氧條件下(5% CO2)相比,661W細胞的基因表達和信號通路發生顯著變化。篩選出506個(ge) 顯著差異表達基因,其中459個(ge) 基因上調,47個(ge) 基因下調。主要涉及細胞對低氧反應、糖酵解、細胞增生負調控及凋亡等過程。

  • 主要信號通路包括糖酵解、糖異生、果糖代謝、磷酸戊糖途徑、HIF-1α、FoxO、胰島素及AMPK信號通路。

  • 關(guan) 鍵低氧相關(guan) 基因包括Aldoa、Aldoc、Gpi1、Hk2、Hk1、Pfkl、Pfkp、Vhl、Fbxo10、Fbxo27,以及Ndrg1、Mt1和VEGFA的mRNA表達水平呈低氧時間依賴性變化。


  • 細胞行為(wei)

  • 凋亡: 低氧條件下,661W細胞的凋亡率顯著增加。

  • 自噬: 缺氧後自噬水平升高,8小時後達到峰值。

  • 糖代謝: 低氧條件下,糖酵解相關(guan) 基因顯著上調,表明661W細胞通過增強糖酵解途徑應對低氧環境。

傳代比例下的表現

  • 傳(chuan) 代比例影響:

  • 1:2: 適用於(yu) 661W細胞生長較快的情況,細胞密度適中,生長狀態良好。

  • 1:4: 適用於(yu) 661W細胞生長較慢的情況,傳(chuan) 代比例較高時細胞密度較低,可能需要更長時間達到適宜的細胞密度。



  • 注意事項:

  • 不同品牌胰酶消化時間差異較大,需嚴(yan) 格控製消化時間。

  • 傳(chuan) 代時需輕柔操作,避免產(chan) 生氣泡。

  • 定期監測661W細胞生長狀態,確保細胞未發生變異或汙染。

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STR鑒定及相關

參考文獻

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