
661W細胞(小鼠視網膜神經節細胞)
- 來源:視網膜;錐狀細胞
- 細胞特征:貼壁細胞 , 成纖維細胞樣
- 培養(yang) 基:DMEM+10% FBS+1% P/S
- 其他: 攜帶SV40基因,這是使661W細胞永生化的關(guan) 鍵因素
661W細胞係來源於(yu) 雄性C57BL/6N轉基因小鼠的視網膜組織,屬於(yu) 視網膜神經節細胞類型,並帶有SV40病毒基因。661W感光細胞係由視網膜錐細胞轉化而成,具備視錐細胞的標記物,是研究視網膜及睫狀體(ti) 疾病的有效細胞模型。
661W細胞特性特征
轉基因特性: 攜帶SV40基因,這是使661W細胞永生化的關(guan) 鍵因素。
視錐細胞標記: 661W細胞表達視錐細胞特有的分子標記,使其成為(wei) 研究視網膜光感受器的理想模型。
光感受性: 661W細胞作為(wei) 視網膜感光細胞,對光刺激有反應。
低氧敏感性: 661W細胞在低氧條件下會(hui) 發生時間依賴性死亡。
661W小鼠視網膜神經節細胞參數表
細胞名稱 | 661W細胞(小鼠視網膜神經節細胞) |
細胞別稱 | 661W; 661w; 661W細胞係 |
細胞類型 | 小鼠視網膜神經節細胞,視網膜錐細胞 |
物種來源 | 雄性C57BL/6N轉基因小鼠 |
形態生長特性 | 成纖維細胞樣;貼壁生長 |
生物安全等級 | 2 |
致瘤性 | 具有致瘤性 |
轉基因特性 | 攜帶SV40基因 |
細胞特征/純度 | 具有視錐細胞標記;純度通常高於90% |
收錄信息 | LONZA; |
培養基配方 | DMEM + 10% FBS + 1% P/S |
專用培養基 | 小鼠視網膜神經節細胞專用培養基 |
培養環境 | 37℃,5% CO2,飽和濕度 |
換液/傳代 | 每2-3天換液;傳代比例1:2至1:4 |
培養基用量 | T25瓶:10-12ml;10cm培養皿:12-15ml |
凍存液/規格 | 92% FBS + 8% DMSO 或 92%完全培養基 + 8% DMSO;200-300萬細胞/ml,1ml/管 |
低氧反應 | 低氧條件下時間依賴性死亡;自噬水平8小時達峰值 |
凋亡/共培養 | 缺氧誘導凋亡增加;與骨髓間充質幹細胞共培養可減少缺氧凋亡 |
細胞鑒定 | MAP-2免疫熒光染色 |
研究用途 | 光感受器細胞研究,視網膜疾病模型,藥物篩選,基因功能研究 |
操作要求 | 嚴格控製胰酶消化時間;輕柔操作避免氣泡 |
質量控製 | 凍存後及時檢查活性;定期監測細胞狀態 |
實驗設計 | 考慮細胞對低氧的敏感性 |
培養教程
661W小鼠視網膜神經節細胞培養教程
傳代步驟
吸幹T25瓶中的原培養(yang) 基。
用3-4ml常溫PBS輕輕衝(chong) 洗661W細胞10-20秒,隨後吸走PBS。
加入約1ml胰酶,輕輕晃動培養(yang) 瓶使胰酶均勻覆蓋在661W細胞層上。
將培養(yang) 瓶放入37℃培養(yang) 箱中消化,觀察661W細胞間隙變化。
當細胞間隙增大但未完全脫落時,加入2-3ml完全培養(yang) 基終止消化。
將661W細胞懸液混勻,900rpm離心3-5分鍾,棄上清液。
用新鮮完全培養(yang) 基輕輕重懸661W細胞,均勻分配至新培養(yang) 瓶中。
補足完全培養(yang) 基,將培養(yang) 瓶放回培養(yang) 箱中繼續培養(yang) 661W細胞。
凍存方法
凍存液配方: 92% FBS + 8% DMSO(推薦給新手)或92%完全培養(yang) 基 + 8% DMSO(推薦給有經驗者)
凍存規格: 200-300萬(wan) 661W細胞/ml,1ml每管
消化並離心後,加入配製好的凍存液輕輕重懸661W細胞。
將661W細胞懸液迅速轉移至標記好的凍存管中。
將凍存管放入程序凍存盒中,置於(yu) -80℃冰箱過夜,次日轉入液氮中保存。
若無程序凍存盒,可將凍存管放在泡沫盒中於(yu) 4℃靜置5-10分鍾,再於(yu) -20℃靜置2小時後轉入-80℃冰箱過夜,次日轉入液氮保存。
注意事項
消化控製: 不同品牌的胰酶消化時間差異較大,需嚴(yan) 格控製消化時間以避免對661W細胞的過度損傷(shang) 。
操作要求: 傳(chuan) 代操作時需輕柔,避免產(chan) 生過多氣泡。
質量控製: 凍存後應及時複蘇一管661W細胞以檢查細胞活性,並定期監測661W細胞狀態以確保其未發生變異或汙染。
實驗設計: 由於(yu) 661W細胞對低氧條件的敏感性,設計相關(guan) 實驗時需考慮低氧對661W細胞生物學特性的影響。
低氧條件下的生長特性
基因表達和信號通路:低氧條件下(1% O2和5% CO2)與(yu) 常氧條件下(5% CO2)相比,661W細胞的基因表達和信號通路發生顯著變化。篩選出506個(ge) 顯著差異表達基因,其中459個(ge) 基因上調,47個(ge) 基因下調。主要涉及細胞對低氧反應、糖酵解、細胞增生負調控及凋亡等過程。
主要信號通路包括糖酵解、糖異生、果糖代謝、磷酸戊糖途徑、HIF-1α、FoxO、胰島素及AMPK信號通路。
關(guan) 鍵低氧相關(guan) 基因包括Aldoa、Aldoc、Gpi1、Hk2、Hk1、Pfkl、Pfkp、Vhl、Fbxo10、Fbxo27,以及Ndrg1、Mt1和VEGFA的mRNA表達水平呈低氧時間依賴性變化。
細胞行為(wei)
凋亡: 低氧條件下,661W細胞的凋亡率顯著增加。
自噬: 缺氧後自噬水平升高,8小時後達到峰值。
糖代謝: 低氧條件下,糖酵解相關(guan) 基因顯著上調,表明661W細胞通過增強糖酵解途徑應對低氧環境。
傳代比例下的表現
傳(chuan) 代比例影響:
1:2: 適用於(yu) 661W細胞生長較快的情況,細胞密度適中,生長狀態良好。
1:4: 適用於(yu) 661W細胞生長較慢的情況,傳(chuan) 代比例較高時細胞密度較低,可能需要更長時間達到適宜的細胞密度。
注意事項:
不同品牌胰酶消化時間差異較大,需嚴(yan) 格控製消化時間。
傳(chuan) 代時需輕柔操作,避免產(chan) 生氣泡。
定期監測661W細胞生長狀態,確保細胞未發生變異或汙染。
相關資料
STR鑒定及相關
參考文獻
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